如何正確保存抗體？

抗體保存的是否得當，直接決定了抗體的活性和使用效果，那么我們該如何正確保存抗體呢？讓我們一起來看看吧！

一、保存溫度和條件

很多抗體的最佳保存條件是分裝成小包裝凍存于-20°C或-80°C。分裝能使凍融引起的損失減到最小，同時可避免多次在一個管內取樣而由槍頭引入的污染。分裝凍存的抗體，融解一次后剩余抗體應保存于4°C。收到抗體后，應10,000 x g 離心20秒，使管口螺紋內的抗體溶液全部離心至管底，用低蛋白吸附性的微量離心管分裝。分裝量的多少取決于每次試驗的使用量。分裝量不能少于10μl；分裝量越少，由于蒸發和吸附于管內壁而引起的損失會越大。

除了腹水液含蛋白酶應立即凍存外，大多數抗體接收后可在4°C保存一至兩周，隨后可凍存以長期保存。同樣，應按照說明書推薦的條件進行保存。

二、特殊情況

1、酶聯抗體，不應凍存，4°C可保證穩定。凍融會降低酶的活性，同時影響抗體的吸附能力。

2、偶聯標記的抗體，無論是標記的熒光染料、酶還是生物素，都應保存于深色的管內并包裹上鋁箔。如果暴露在光線下可能會減弱偶聯標記物的活性。熒光標記物尤其容易受到光漂白作用，整個實驗過程中均應避光。

3、免疫球蛋白G3同種型抗體凍融后易形成聚合物，因此應一直保存于4°C。

4、用疊氮hua鈉防止污染

為防止微生物污染，在抗體溶液中應加入疊氮hua鈉，終濃度為0.02%（質量百分比）。

5、什么時候不能用疊氮hua鈉

如果用抗體標記活細胞，或用于體內實驗，確保所用制劑中不含疊氮hua鈉。這種抗生素對大多數有機體都有毒性：會阻斷細胞色素電子傳遞系統的信號。

疊氮hua鈉會干擾胺基的偶聯標記，應在進行標記之前將其除去。標記后抗體可保存于疊氮hua鈉，也可用不含胺基的硫柳汞替代。疊氮hua鈉可用透析或凝膠過濾法從抗體溶液中除去。免疫球蛋白 G的分子量是150,000 kDa（免疫球蛋白M的分子量是600,000 kDa），疊氮hua鈉的分子量是65道爾頓。使用14,000 kDa的微量透析裝置，隨著疊氮hua鈉的擴散，抗體將保留。將帶有燒杯的磁力攪拌器置于4°C攪拌透析裝置6小時 , 每毫升抗體溶液要用至少1升的磷酸鹽緩沖液。更換2次lin酸鹽緩沖液，每次均攪拌至少6小時。如果可以的話，所有材料均要求無菌，所有溶液都應無菌配制。

三、凍存 / 復蘇的損失

反復凍融可使抗體變性，使其形成聚合物而降低了抗體結合能力。

大多數抗體在-20°C保存就足夠了，沒有必要置于-80°C保存。千萬不要使用無霜的冰箱。反復凍融能減少霜的形成，但這正是應該避免的。同理，抗體應該放置于冰箱中溫度變化最小的部位，如應放置于冰箱格里，而不應放置于冰箱門上。

稀釋至工作濃度的抗體最好不要在4°C保存超過一天時間。通常蛋白質在較高濃度保存時不易發生降解，理想濃度為1mg/ml或更高，因為抗體溶液中包含了如牛血清白蛋白等蛋白質穩定劑。加入的蛋白可吸附于管壁從而使抗體的損失減到最小。對用于聚合的抗體，不應加入蛋白穩定劑，因為其可能會與抗體競爭而降低抗體的聚合活性。

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